جلد 23، شماره 2 - ( تابستان 1405 )
جلد 23 شماره 2 صفحات 172-156 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Ethics code: IR.TMI.REC.1403.020
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Shiri Y, Golmohammadi Zahuri M, Jafarpouri M R, Deyhim M R. An Overview of Alternative Platelet Storage Methods: From Room Temperature to Cold Storage and Freezing. bloodj 2026; 23 (2) :156-172
URL: http://bloodjournal.ir/article-1-1636-fa.html
URL: http://bloodjournal.ir/article-1-1636-fa.html
شیری یاشار، گل محمدی ظهوری مهرناز، جعفرپوری محمدرضا، دیهیم محمدرضا. مروری بر روشهای جایگزین نگهداری پلاکت : از نگهداری در دمای اتاق تا نگهداری در سرما و انجماد. فصلنامه پژوهشی خون. 1405; 23 (2) :156-172
دانشیار مرکز تحقیقات انتقال خون ـ مؤسسه عالی آموزشی و پژوهشی طب انتقال خون
چکیده: (247 مشاهده)
سابقه و هدف
نگهداری پلاکتها در دمای 24-20 درجه سانتیگراد، روش استانداردی است که در مراکز انتقال خون مورد استفاده قرار می گیرند. پلاکتها در طول نگهداری در این شرایط دچار آسیب ذخیره پلاکتی (PSL) می شوند، ضمن این که ریسک آلودگی باکتریایی نیز در این روش وجود دارد. به منظور رفع این محدودیتها، محققان به دنبال روشهای جایگزین نگهداری پلاکت میباشند. این مقاله به مرور روشهای جایگزین و مقایسه آن¬ها با یکدیگر میپردازد.
مواد و روشها
در این مطالعه مروری، مطالعات مرتبط با روشهای نگهداری پلاکت جستجو شد و متون مقالات و مراجع مربوطه بررسی، شناسایی و استخراج گردید. کلید واژههای انگلیسی (platelet storage ، platelet concentrate، platelet storage in room temperature ، cold storage ، cryopreservation ، lyophilization ، Platelet additive solution) مرتبط با موضوع در پایگاههای داده SID، Scopus، Web of Science، PubMed، موتور جستجوی Google و Google Scholar در بازه زمانی ۱۹۵۴ تا 2025 جستجو شد و در نهایت 93 مقاله مورد استفاده قرار گرفت. سؤال اصلی در این پژوهش این است که آیا روشهای دیگر نگهداری پلاکت با توجه به مزایا و محدودیتهایی که دارا میباشند می توانند از نظر کاربرد بالینی در مقایسه با نگهداری پلاکت در دمای اتاق (روش استاندارد) جایگزین گردند؟
یافتهها
نگهداری پلاکتها در سرما (6-1 درجه سانتیگراد) با کاهش متابولیزم و کاهش ریسک آلودگی باکتریایی همراه است و هر چند پلاکتها عملکرد هموستاتیک قویتری دارند ولی کاهش بقا پس از تزریق یکی از محدودیتهای آن میباشد. روش لیوفیلیزاسیون، امکان نگهداری طولانی مدت پلاکتها را در دمای محیط فراهم می کند، هر چند بقا پلاکتهای لیوفیلیزه پس از تزریق کوتاه میباشد. منجمدسازی نیز امکان ذخیرهسازی طولانی مدت پلاکتها را فراهم کرده، اما به تجهیزات پیشرفته و انجام مراحل آمادهسازی تخصصی نیاز دارد، به علاوه، پلاکتها دچار تغییرات ساختاری جدی میگردند. استفاده از محلولهای افزودنی پلاکت (PAS) نیز به عنوان راهکاری مؤثر برای کاهش وابستگی به پلاسما، کاهش واکنشهای آلرژیک و تبزا و همچنین بهبود شرایط متابولیکی مطرح میباشد، هر چند بهینهسازی نوع و غلظت آن نیازمند پژوهشهای بیشتری است.
نتیجه گیری
روشهای لیوفیلیزاسیون ، محدودیتهایی شامل هزینه بالا و زمانبر بودن تولید فرآیند را به همراه داشته، در عین حال شواهد کافی برای استفاده ایمن از این روشها هنوز در دسترس نمیباشد. استفاده از پلاکتهای منجمد شده در موارد خونریزی شدید و در شرایط جنگی زمانی که دسترسی کافی به فرآورده پلاکتی نباشد به عنوان جایگزین پیشنهاد میگردد. برای استفاده از PAS نیاز به مطالعات بیشتری میباشد. با این وجود، نگهداری پلاکت در24-20 درجه سانتیگراد به علت بقا مناسب پلاکتها پس از تزریق، همچنان به عنوان روش مرجع میباشد.
نگهداری پلاکتها در دمای 24-20 درجه سانتیگراد، روش استانداردی است که در مراکز انتقال خون مورد استفاده قرار می گیرند. پلاکتها در طول نگهداری در این شرایط دچار آسیب ذخیره پلاکتی (PSL) می شوند، ضمن این که ریسک آلودگی باکتریایی نیز در این روش وجود دارد. به منظور رفع این محدودیتها، محققان به دنبال روشهای جایگزین نگهداری پلاکت میباشند. این مقاله به مرور روشهای جایگزین و مقایسه آن¬ها با یکدیگر میپردازد.
مواد و روشها
در این مطالعه مروری، مطالعات مرتبط با روشهای نگهداری پلاکت جستجو شد و متون مقالات و مراجع مربوطه بررسی، شناسایی و استخراج گردید. کلید واژههای انگلیسی (platelet storage ، platelet concentrate، platelet storage in room temperature ، cold storage ، cryopreservation ، lyophilization ، Platelet additive solution) مرتبط با موضوع در پایگاههای داده SID، Scopus، Web of Science، PubMed، موتور جستجوی Google و Google Scholar در بازه زمانی ۱۹۵۴ تا 2025 جستجو شد و در نهایت 93 مقاله مورد استفاده قرار گرفت. سؤال اصلی در این پژوهش این است که آیا روشهای دیگر نگهداری پلاکت با توجه به مزایا و محدودیتهایی که دارا میباشند می توانند از نظر کاربرد بالینی در مقایسه با نگهداری پلاکت در دمای اتاق (روش استاندارد) جایگزین گردند؟
یافتهها
نگهداری پلاکتها در سرما (6-1 درجه سانتیگراد) با کاهش متابولیزم و کاهش ریسک آلودگی باکتریایی همراه است و هر چند پلاکتها عملکرد هموستاتیک قویتری دارند ولی کاهش بقا پس از تزریق یکی از محدودیتهای آن میباشد. روش لیوفیلیزاسیون، امکان نگهداری طولانی مدت پلاکتها را در دمای محیط فراهم می کند، هر چند بقا پلاکتهای لیوفیلیزه پس از تزریق کوتاه میباشد. منجمدسازی نیز امکان ذخیرهسازی طولانی مدت پلاکتها را فراهم کرده، اما به تجهیزات پیشرفته و انجام مراحل آمادهسازی تخصصی نیاز دارد، به علاوه، پلاکتها دچار تغییرات ساختاری جدی میگردند. استفاده از محلولهای افزودنی پلاکت (PAS) نیز به عنوان راهکاری مؤثر برای کاهش وابستگی به پلاسما، کاهش واکنشهای آلرژیک و تبزا و همچنین بهبود شرایط متابولیکی مطرح میباشد، هر چند بهینهسازی نوع و غلظت آن نیازمند پژوهشهای بیشتری است.
نتیجه گیری
روشهای لیوفیلیزاسیون ، محدودیتهایی شامل هزینه بالا و زمانبر بودن تولید فرآیند را به همراه داشته، در عین حال شواهد کافی برای استفاده ایمن از این روشها هنوز در دسترس نمیباشد. استفاده از پلاکتهای منجمد شده در موارد خونریزی شدید و در شرایط جنگی زمانی که دسترسی کافی به فرآورده پلاکتی نباشد به عنوان جایگزین پیشنهاد میگردد. برای استفاده از PAS نیاز به مطالعات بیشتری میباشد. با این وجود، نگهداری پلاکت در24-20 درجه سانتیگراد به علت بقا مناسب پلاکتها پس از تزریق، همچنان به عنوان روش مرجع میباشد.
نوع مطالعه: مروري |
موضوع مقاله:
انتقال خون
فهرست منابع
1. Cheng L, Wang L, Wang S, Liu Q, Diao R, Yao C. The effect of physical cues on platelet storage lesion. Hematology. 2025; 30(1): 2450573. [DOI:10.1080/16078454.2025.2450573] [PMID]
2. Mahajan J, Padula MP, Marks DC, Johnson L. Cold-stored platelets: revisiting assumptions and addressing variability to support implementation. Front Med (Lausanne). 2025; 12:1743750. [DOI:10.3389/fmed.2025.1743750] [PMID] [PMCID]
3. Toora E, Kulkarni RG, Manivannan P, Sastry AS, Basavarajegowda A, Sahoo D. Quality assessment of platelet concentrates prepared by platelet-rich plasma, buffy-coat, and apheresis methods in a tertiary care spital in South India: A cross-sectional study. Asian J Transfus Sci. 2023; 17(2): 239-45. [DOI:10.4103/ajts.ajts_73_22] [PMID] [PMCID]
4. Guo L, Qian C, Gao C, Heililahong H, Xin M, Hang L, et al. Activation of the pentose phosphate pathway mitigates platelet storage lesions and improves platelet preservation quality. Thromb Res. 2025; 252:109377. [DOI:10.1016/j.thromres.2025.109377] [PMID]
5. Hechler B, Ohlmann P, Chafey P, Ravanat C, Eckly A, Maurer E, et al. Preserved functional and biochemical characteristics of platelet components prepared with amotosalen and ultraviolet A for pathogen inactivation. Transfusion. 2013 ;53(6): 1187-200. [DOI:10.1111/j.1537-2995.2012.03923.x] [PMID]
6. Van Aelst B, Bens K, Sabot B, Vertongen S, Feys HB, Compernolle V, et al. Platelet Additive Solutions SSP+ and T-PAS+ Are Interchangeable for Platelet Concentrate Storage despite Differences in Composition and Plasticizer. Transfus Med Hemother. 2024; 51(6): 424-9. [DOI:10.1159/000538003] [PMID] [PMCID]
7. van Hout FMA, Caram-Deelder C, Pors A, Middelburg RA, Klautz RJM, Rosseel PMJ, et al. Storage duration of platelet concentrates and clinical outcomes in cardiac surgery patients. Transfusion. 2025; 65(11): 2034-44. [DOI:10.1111/trf.18410] [PMID] [PMCID]
8. Roan C, Lei P, Marks DC, Johnson L. Making cold platelets even cooler: Freezing cold-stored platelets to maximize inventory potential. Transfusion. 2026.e pub2025 Nov17. [DOI:10.1111/trf.70005] [PMID]
9. Shea SM, Spinella PC, Thomas KA. Leveraging the Multifaceted Platelet Storage Lesion to Advance Precision Platelet Transfusion Medicine. Anesthesiology. 2026; 144(3): 692-710. [DOI:10.1097/ALN.0000000000005746] [PMID]
10. Hoffbrand AV. Essential Haematology, 8th Edition, 2020. p: 410-11.
11. Male C, Koren D, Eichelberger B, Kaufmann K, Panzer S. Monitoring survival and function of transfused platelets in Glanzmann thrombasthenia by flow cytometry and thrombelastography. Vox Sang. 2006; 91(2):174-7. [DOI:10.1111/j.1423-0410.2006.00797.x] [PMID]
12. Jug R, La Rocca U, Al-Riyami AZ, Bathla A, Metcalf RA, White SK, et al. The clinical use of platelet transfusions: A systematic literature review and meta-analysis on behalf of the International Collaboration for Transfusion Medicine Guidelines. Transfusion. 2025; 65(6): 1155-69. [DOI:10.1111/trf.18277] [PMID] [PMCID]
13. Devine DV, Serrano K. The platelet storage lesion. Clin Lab Med. 2010; 30(2): 475-87. [DOI:10.1016/j.cll.2010.02.002] [PMID]
14. Shea SM, Spinella PC, Thomas KA. Leveraging the Multifaceted Platelet Storage Lesion to Advance Precision Platelet Transfusion Medicine. Anesthesiology. 2026 .1;144(3): 692-710. [DOI:10.1097/ALN.0000000000005746] [PMID]
15. Comparative study between intralesional injection of platelet rich plasma and intra lesional triamcinolone for the treatment of alopecia areata. J Ayub Med Abbottabad.2022; 34 (4):762-765 [DOI:10.55519/JAMC-04-10933] [PMID]
16. Guide to the preparation, use and quality assurance of blood components, 22nd Edition, 2025. p:191-2.
17. Murphy S, Gardner FH. Platelet preservation. Effect of storage temperature on maintenance of platelet viability--deleterious effect of refrigerated storage. N Engl J Med. 1969; 280(20): 1094-8. [DOI:10.1056/NEJM196905152802004] [PMID]
18. The 21 CFR (Code of Federal Regulations) online database: Food and Drug Administration regulations full-text Med Ref Serv Q. 1993;12(1):7-15. [DOI:10.1300/J115V12N01_02] [PMID]
19. Vassallo R. Scott Murphy, MD: platelet storage pioneer. Transfus Med Rev. 2011; 25(2): 156-61. [DOI:10.1016/j.tmrv.2010.11.007] [PMID]
20. Gulliksson H, AuBuchon JP, Vesterinen M, Sandgren P, Larsson S, Pickard CA, et al. Storage of platelets in additive solutions: a pilot in vitro study of the effects of potassium and magnesium. Vox Sang. 2002; 82(3): 131-6. [DOI:10.1046/j.1423-0410.2002.drfgv158.x] [PMID]
21. van der Meer PF, de Korte D. Platelet Additive Solutions: A Review of the Latest Developments and Their Clinical Implications. Transfus Med Hemother. 2018; 45(2): 98-102. [DOI:10.1159/000487513] [PMID] [PMCID]
22. van Hout FMA, Middelburg RA, van der Meer PF, Pors A, Wiersum-Osselton JC, Schipperus MR, et al. Effect of storage of platelet concentrates in PAS-B, PAS-C, or plasma on transfusion reactions. Transfusion. 2019; 59(10): 3140-5. [DOI:10.1111/trf.15497] [PMID]
23. Javadzadeh Shahshahani H, Akhavan Tafti F, Amini Kafi‐abad S. An overview of three methods used to prepare the platelet components from whole blood and apheresis method. J Iran Blood Transfus. 2023; 20(3):236-54.
24. Marder, Victor J. Hemostasis and Thrombosis : Basic Principles and Clinical Practice. 6th ed. Philadelphia: Wolters Kluwer/Lippincott Williams & Wilkins Health, 2013. Print.
25. Bertolini F, Murphy S. A multicenter evaluation of reproducibility of swirling in platelet concentrates. Biomedical Excellence for Safer Transfusion (BEST) Working Party of the International Society of Blood Transfusion. Transfusion. 1994; 34(9):796-801. [DOI:10.1046/j.1537-2995.1994.34994378282.x] [PMID]
26. George CE, Saunders CV, Morrison A, Scorer T, Jones S, Dempsey NC. Cold stored platelets in the management of bleeding: is it about bioenergetics? Platelets. 2023;34(1):2188969. [DOI:10.1080/09537104.2023.2188969] [PMID]
27. Herter JM, Rossaint J, Zarbock A. Platelets in inflammation and immunity. J Thromb Haemost. 2014; 12(11):1764-75. [DOI:10.1111/jth.12730] [PMID]
28. Bode AP, Orton SM, Frye MJ, Udis BJ. Vesiculation of platelets during in vitro aging. Blood. 1991; 77(4): 887-95.
https://doi.org/10.1182/blood.V77.4.887.bloodjournal774887 [DOI:10.1182/blood.V77.4.887.887]
29. Plaza EM, Lozano ML, Guiu IS, Egea JM, Vicente V, De Terán LC, et al. Evaluation of platelet function during extended storage in additive solution, prepared in a new container that allows manual buffy-coat platelet pooling and leucoreduction in the same system. Blood Transfus. 2012; 10(4): 480-9.
30. Böck M, Glaser A, Pfosser A, Schleuning M, Heim MU, Mempel W. Storage of single-donor platelet concentrates: metabolic and functional changes. Transfusion.1993; 33(4): 311-5. [DOI:10.1046/j.1537-2995.1993.33493242638.x] [PMID]
31. Kilkson H, Holme S, Murphy S. Platelet metabolism during storage of platelet concentrates at 22 degrees C. Blood. 1984; 64(2): 406-14.
https://doi.org/10.1182/blood.V64.2.406.bloodjournal642406 [DOI:10.1182/blood.V64.2.406.406]
32. Murphy S. The oxidation of exogenously added organic anions by platelets facilitates maintenance of pH during their storage for transfusion at 22 degrees C. Blood. 1995; 85(7) :1929-35. [DOI:10.1182/blood.V85.7.1929.bloodjournal8571929]
33. Shi J, Wang W, Xu J, Yin W. Regulation of lipid metabolism: a new strategy for platelet storage. Platelets. 2025; 36(1): 2465321. [DOI:10.1080/09537104.2025.2465321] [PMID]
34. Palavecino EL, Yomtovian RA, Jacobs MR. Bacterial contamination of platelets. Transfus Apher Sci. 2010; 42(1):71-82. [DOI:10.1016/j.transci.2009.10.009] [PMID]
35. Lu W, Fung M. Platelets treated with pathogen reduction technology: current status and future direction. F1000Res. 2020; 9. [DOI:10.12688/f1000research.20816.1] [PMID] [PMCID]
36. Slichter SJ, Kaufman RM, Assmann SF, McCullough J, Triulzi DJ, Strauss RG, et al. Dose of prophylactic platelet transfusions and prevention of hemorrhage. N Engl J Med. 2010; 362(7): 600-13. [DOI:10.1056/NEJMoa0904084] [PMID] [PMCID]
37. Dumont LJ, Cancelas JA, Graminske S, Friedman KD, Vassallo RR, Whitley PH, et al. In vitro and in vivo quality of leukoreduced apheresis platelets stored in a new platelet additive solution. Transfusion. 2013; 53(5): 972-80. [DOI:10.1111/j.1537-2995.2012.03841.x] [PMID]
38. World Health Organization (WHO). Global Status Report on Blood Safety and Availability 2021. Geneva: WHO; 2022.
39. McDonald CP, Lowe P, Roy A, Robbins S, Hartley S, Harrison JF, et al. Evaluation of donor arm disinfection techniques. Vox Sang. 2001 ;80(3): 135-41. [DOI:10.1046/j.1423-0410.2001.00029.x] [PMID]
40. de Korte D, Marcelis JH, Verhoeven AJ, Soeterboek AM. Diversion of first blood volume results in a reduction of bacterial contamination for whole-blood collections. Vox Sang. 2002; 83(1):13-6. [DOI:10.1046/j.1423-0410.2002.00189.x] [PMID]
41. Sachdev S, Dhawan HK, Khetan D, Jain A, Sharma RR, Marwaha N. Visual inspection of platelet concentrates; still an essential prerelease check. Asian J Transfus Sci. 2012;6(2): 139. [DOI:10.4103/0973-6247.98912] [PMID] [PMCID]
42. Jacobs MR, Smith D, Heaton WA, Zantek ND, Good CE. Detection of bacterial contamination in prestorage culture-negative apheresis platelets on day of issue with the Pan Genera Detection test. Transfusion. 2011; 51(12): 2573-82. [DOI:10.1111/j.1537-2995.2011.03308.x] [PMID]
43. Cid J, Charry P, Lozano M. Therapeutic efficacy and safety of pathogen-reduced platelet components: Results of a meta-analysis of randomized controlled trials. Vox Sang. 2024; 119(3): 203-11. [DOI:10.1111/vox.13573] [PMID]
44. Estcourt LJ, Birchall J, Allard S, Bassey SJ, Hersey P, Kerr JP, et al. Guidelines for the use of platelet transfusions. Br J Haematol. 2017; 176(3): 365-94. [DOI:10.1111/bjh.14423] [PMID]
45. Kogler VJ, Stolla M. There and back again: the once and current developments in donor-derived platelet products for hemostatic therapy. Blood. 2022; 139(26):3688-98. [DOI:10.1182/blood.2021014889] [PMID] [PMCID]
46. Schnoor B, Papa AL. Lyophilized platelets inhibit platelet aggregation with simultaneous paradoxical promotion of platelet adhesion. Front Bioeng Biotechnol. 2022; 10: 941817. [DOI:10.3389/fbioe.2022.941817] [PMID] [PMCID]
47. Ang AL , Gan LSH , Tuy TT, Ang CH, Tan CW, Tan HH, et al. A randomized cross-over study of cryopreserved platelets in prophylactic transfusions of thrombocytopenic patients. Transfusion. 2023; 63(9):1649-60. [DOI:10.1111/trf.17503] [PMID]
48. Schiffer CA, Aisner J, Wiernik PH. Clinical experience with transfusion of cryopreserved platelets. Br J Haematol. 1976;34(3) :377-85. [DOI:10.1111/j.1365-2141.1976.tb03584.x] [PMID]
49. Reddoch-Cardenas KM, Montgomery RK, Lafleur CB, Peltier GC, Bynum JA, Cap AP. Cold storage of platelets in platelet additive solution: an in vitro comparison of two Food and Drug Administration-approved collection and storage systems. Transfusion. 2018; 58(7):1682-8. [DOI:10.1111/trf.14603] [PMID]
50. Read MS, Reddick RL, Bode AP, Bellinger DA, Nichols TC, Taylor K, et al. Preservation of hemostatic and structural properties of rehydrated lyophilized platelets: potential for long-term storage of dried platelets for transfusion. Proc Natl Acad Sci U S A. 1995; 92(2):397-401. [DOI:10.1073/pnas.92.2.397] [PMID] [PMCID]
51. Barroso J, Osborne B, Teramura G, Pellham E, Fitzpatrick M, Biehl R, et al. Safety evaluation of a lyophilized platelet-derived hemostatic product. Transfusion. 2018; 58(12): 2969-77. [DOI:10.1111/trf.14972] [PMID] [PMCID]
52. Andia I, Perez-Valle A, Del Amo C, Maffulli N. Freeze-Drying of Platelet-Rich Plasma: The Quest for Standardization. Int J Mol Sci. 2020; 21(18): 6904. [DOI:10.3390/ijms21186904] [PMID] [PMCID]
53. Al Mahmasani L, Hodroj MH, Finianos A, Taher A. COVID-19 pandemic and transfusion medicine: the worldwide challenge and its implications. Ann Hematol. 2021; 100(5):1115-22. [DOI:10.1007/s00277-021-04441-y] [PMID] [PMCID]
54. Ohanian M, Cancelas JA, Davenport R, Pullarkat V, Hervig T, Broome C, et al. Freeze-dried platelets are a promising alternative in bleeding thrombocytopenic patients with hematological malignancies. Am J Hematol. 2022; 97(3): 256-66. [DOI:10.1002/ajh.26403] [PMID]
55. Nossel HL, Wilner GD, Drillings M. Inhibition of collagen-induced platelet aggregation by normal plasma. J Clin Invest. 1971; 50(10):2168-75. [DOI:10.1172/JCI106711] [PMID] [PMCID]
56. Fischer TH, Merricks E, Bellinger DA, Hayes PM, Smith RS, Raymer RA, et al. Splenic clearance mechanisms of rehydrated, lyophilized platelets. Artif Cells Blood Substit Immobil Biotechnol. 2001;29(6):439-51. [DOI:10.1081/BIO-100108549] [PMID]
57. Getz TM, Montgomery RK, Bynum JA, Aden JK, Pidcoke HF, Cap AP. Storage of platelets at 4°C in platelet additive solutions prevents aggregate formation and preserves platelet functional responses. Transfusion. 2016; 56(6): 1320-8. [DOI:10.1111/trf.13511] [PMID]
58. Bynum JA, Meledeo MA, Getz TM, Rodriguez AC, Aden JK, Cap AP, et al. Bioenergetic profiling of platelet mitochondria during storage: 4°C storage extends platelet mitochondrial function and viability. Transfusion. 2016; 56 Suppl 1:S76-84. [DOI:10.1111/trf.13337]
59. Ketter PM, Kamucheka R, Arulanandam B, Akers K, Cap AP. Platelet enhancement of bacterial growth during room temperature storage: mitigation through refrigeration. Transfusion. 2019; 59(S2): 1479-89. [DOI:10.1111/trf.15255] [PMID]
60. Becker GA, Tuccelli M, Kunicki T, Chalos MK, Aster RH. Studies of platelet concentrates stored at 22 C nad 4 C. Transfusion. 1973; 13(2): 61-8. [DOI:10.1111/j.1537-2995.1973.tb05442.x] [PMID]
61. Zhao HW, Serrano K, Stefanoni D, D'Alessandro A, Devine DV. In Vitro Characterization and Metabolomic Analysis of Cold-Stored Platelets. J Proteome Res. 2021; 20(5):2251-65. [DOI:10.1021/acs.jproteome.0c00792] [PMID]
62. Pandey S, Belanger GA, Rajbhandary S, Cohn CS, Benjamin RJ, Bracey AW, et al. A survey of US hospitals on platelet inventory management, transfusion practice, and platelet availability. Transfusion. 2021; 61(9):2611-20. [DOI:10.1111/trf.16561] [PMID]
63. Zucker MB, Borrelli J. Reversible alterations in platelet morphology produced by anticoagulants and by cold. Blood. 1954; 9(6): 602-8. [DOI:10.1182/blood.V9.6.602.602]
64. White JG, Krivit W. An ultrastructural basis for the shape changes induced in platelets by chilling. Blood. 1967; 30(5): 625-35. [DOI:10.1182/blood.V30.5.625.625]
65. Reddoch KM, Pidcoke HF, Montgomery RK, Fedyk CG, Aden JK, Ramasubramanian AK, et al. Hemostatic function of apheresis platelets stored at 4°C and 22°C. Shock. 2014;41 Suppl 1(0 1):54-61. [DOI:10.1097/SHK.0000000000000082] [PMID] [PMCID]
66. Oliver AE, Tablin F, Walker NJ, Crowe JH. The internal calcium concentration of human platelets increases during chilling. Biochim Biophys Acta. 1999; 1416(1-2): 349-60. [DOI:10.1016/S0005-2736(98)00239-9]
67. Josefsson EC, Gebhard HH, Stossel TP, Hartwig JH, Hoffmeister KM. The macrophage alphaMbeta2 integrin alphaM lectin domain mediates the phagocytosis of chilled platelets. J Biol Chem. 2005 ;280(18):18025-32. [DOI:10.1074/jbc.M501178200] [PMID]
68. Badlou BA, Spierenburg G, Ulrichts H, Deckmyn H, Smid WM, Akkerman JW. Role of glycoprotein Ibalpha in phagocytosis of platelets by macrophages. Transfusion. 2006; 46(12): 2090-9. [DOI:10.1111/j.1537-2995.2006.01034.x] [PMID]
69. Rumjantseva V, Grewal PK, Wandall HH, Josefsson EC, Sørensen AL, Larson G, et al. Dual roles for hepatic lectin receptors in the clearance of chilled platelets. Nat Med. 2009; 15(11):1273-80. [DOI:10.1038/nm.2030] [PMID] [PMCID]
70. Wandall HH, Hoffmeister KM, Sørensen AL, Rumjantseva V, Clausen H, Hartwig JH, et al. Galactosylation does not prevent the rapid clearance of long-term, 4 degrees C-stored platelets. Blood. 2008; 111(6): 3249-56. [DOI:10.1182/blood-2007-06-097295] [PMID]
71. Dumont LJ, Cancelas JA, Dumont DF, Siegel AH, Szczepiorkowski ZM, Rugg N, et al. A randomized controlled trial evaluating recovery and survival of 6% dimethyl sulfoxide-frozen autologous platelets in healthy volunteers. Transfusion. 2013; 53(1): 128-37. [DOI:10.1111/j.1537-2995.2012.03735.x] [PMID]
72. Slichter SJ, Jones M, Ransom J, Gettinger I, Jones MK, Christoffel T, et al. Review of in vivo studies of dimethyl sulfoxide cryopreserved platelets. Transfus Med Rev. 2014; 28(4): 212-25. [DOI:10.1016/j.tmrv.2014.09.001] [PMID]
73. Waters L, Marks DC, Johnson L. Strategies to improve platelet cryopreservation: A narrative review. Transfusion. 2025; 65(4): 740-9. [DOI:10.1111/trf.18204] [PMID] [PMCID]
74. Johnson L, Coorey CP, Marks DC. The hemostatic activity of cryopreserved platelets is mediated by phosphatidylserine-expressing platelets and platelet microparticles. Transfusion. 2014; 54(8): 1917-26. [DOI:10.1111/trf.12578] [PMID]
75. Six KR , Delabie W, Devreese KMJ, Johnson L , Marks DC, Dumont LJ, et al. Comparison between manufacturing sites shows differential adhesion, activation, and GPIbα expression of cryopreserved platelets. Transfusion. 2018; 58(11): 2645-56. [DOI:10.1111/trf.14828] [PMID]
76. Waters L, Padula MP, Marks DC, Johnson L. Cryopreserved platelets demonstrate reduced activation responses and impaired signaling after agonist stimulation. Transfusion. 2017; 57(12): 2845-57. [DOI:10.1111/trf.14310] [PMID]
77. Johnson L, Reade MC, Hyland RA, Tan Sh, Marks DC. In vitro comparison of cryopreserved and liquid platelets: potential clinical implications. Transfusion. 2015; 55(4): 838-47. [DOI:10.1111/trf.12915] [PMID]
78. Waters L, Padula MP, Marks DC, Johnson L. Calcium chelation: a novel approach to reduce cryopreservation-induced damage to frozen platelets. Transfusion. 2020; 60(7): 1552-63. [DOI:10.1111/trf.15799] [PMID]
79. Raynel S, Padula MP, Marks DC, Johnson L. Cryopreservation alters the membrane and cytoskeletal protein profile of platelet microparticles. Transfusion. 2015; 55(10): 2422-32. [DOI:10.1111/trf.13165] [PMID]
80. Deyhim MR, Mesbah-Namin SA, Yari F, Taghikhani M, Amirizadeh N. L-carnitine effectively improves the metabolism and quality of platelet concentrates during storage. Ann Hematol. 2015; 94(4): 671-80. [DOI:10.1007/s00277-014-2243-5] [PMID]
81. Norouzi M, Mesbah-Namin SA, Sharifi Z, Deyhim MR. L-carnitine contributes to enhancement of viability and quality of platelet concentrates through changing the apoptotic and anti-apoptotic associated microRNAs. Transfus Clin Biol. 2024; 31(2): 87-94. [DOI:10.1016/j.tracli.2024.01.007] [PMID]
82. Jackson DP, Sorensen DK, Cronkite EP, Bond VP, Fliedner TM. Effectiveness of transfusions of fresh and lyophilized platelets in controlling bleeding due to thrombocytopenia. J Clin Invest. 1959; 38(10 Pt 1-2): 1689-97. [DOI:10.1172/JCI103947] [PMID] [PMCID]
83. Macko AR, Crossland RF, Cap AP, Fryer DM, Mitchell TA, Pusateri AE, et al. Control of severe intra-abdominal hemorrhage with an infusible platelet- derived hemostatic agent in a nonhuman primate (rhesus macaque) model. J Trauma Acute Care Surg. 2016; 80(4): 617-24. [DOI:10.1097/TA.0000000000000964] [PMID]
84. Liu C, Su Y, Guo W, Ma X, Qiao R. The platelet storage lesion, what are we working for? J Clin Lab Anal. 2024; 38(1-2): e24994. [DOI:10.1002/jcla.24994] [PMID] [PMCID]
85. Shea SM ,Thomas KA, Spinella PC. Leveraging the Multifaceted Platelet Storage Lesion to Advance Precision Platelet Transfusion Medicine. Anesthesiology. 2026; 144(3): 692-710. [DOI:10.1097/ALN.0000000000005746] [PMID]
86. Mahajan J, Padula MP, Marks DC, Johnson L. Cold-stored platelets: revisiting assumptions and addressing variability to support implementation. Frontiers in Medicine. 2025; 15:12:1743750 [DOI:10.3389/fmed.2025.1743750] [PMID] [PMCID]
87. Mack JP, Miles J, Stolla M. Cold-Stored Platelets: Review of Studies in Humans. Transfusion Medicine Reviews. 2020; 34(4): 221-6. [DOI:10.1016/j.tmrv.2020.08.003] [PMID]
88. Reade MC, Marks DC, Howe BD, Bailey MJ, Bannon PG, Eastwood GM, et al. Cryopreserved vs Liquid-Stored Platelets for the Treatment of Surgical Bleeding: The CLIP-II Randomized Noninferiority. Clinical Trial. JAMA. 2026; 335(7): 600-8. [DOI:10.1001/jama.2025.23549] [PMID]
89. Bode AP, Fischer TH. Lyophilized platelets: fifty years in the making. Artif Cells Blood Substit Immobil Biotechnol. 2007; 35(1): 125-33. [DOI:10.1080/10731190600974962] [PMID]
90. Helmi Siasi N, Deyhim M.R, Amiri F, Amini Kafi-Abad S. The antioxidant impact of the L-carnitine (LC) in platelet concentrates during storage . J Iran Blood Transfus. 2017; 14(3): 175-87
91. Deyhim M.R, Yari F, Mesbah Namini SA, Khoshnaghsh F. Protective effect of L-carnitine on platelet apoptosis during storage of platelet concentrate.Transfus Clin Biol. 2020; 27(3):139-46 [DOI:10.1016/j.tracli.2020.06.002] [PMID]
92. Amiri F, Mohammadi Dahaj M, Helmi Siaisi N, Deyhim M.R. Treatment of platelet concentrates with the L-carnitine modulates platelets oxidative stress and platelet apoptosis due to mitochondrial reactive oxygen species reduction and reducing cytochrome C release during storage. J Thromb Thrombolysis. 2021; 51(2): 277-85 [DOI:10.1007/s11239-020-02241-1] [PMID]
93. Bagheri S, Samiee Sh, Nikougoftar Zarif M, Deyhim M.R. L-Carnitine modulates free mitochondrial DNA DAMPs and platelet storage lesion during storage of platelet concentrates. J Thromb Thrombolysis .2023; 55(1) :60-6. [DOI:10.1007/s11239-022-02725-2] [PMID]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
